Решено SF | Исследование и лечения наследственных заболевании - СМЦ: Генная инженерия

  • Автор темы Автор темы Kim Dong
  • Дата начала Дата начала
Статус
Закрыто для дальнейших ответов.

Kim Dong

Green Server
Лидеры
Сообщения
61
Реакции
176
image.png

В этом проекте команда Современного медицинского центра представило исследовательскую работу с ДНК человека в сфере генной инженерии.
Дата выполнения проекта: 22.11.2025 - 09.11.2025

Отчёт об исследовательской работе

по направлению: генная инженерия
Современный медицинский центр (СМЦ)
Период выполнения: 22.10.2025 – 09.11.2025



1) Анализ ДНК человека с наследственными заболеваниями и апробация методов редактирования геномов для разработки потенциальных терапевтических стратегий.

Генная инженерия — перспективная область биотехнологии, направленная на целенаправленное изменение генетической информации организмов с применением современных молекулярно‑биологических методов.

Цель настоящего исследования — анализ ДНК человека с наследственными заболеваниями и апробация методов редактирования геномов для разработки потенциальных терапевтических стратегий.


Проект СМЦ: «Генная инженерия»

Цель проекта
Разработка инновационных методов диагностики и терапии наследственных заболеваний посредством анализа и редактирования ДНК человека. Конечная задача — лечение пациентов на основе модифицированных геномов для излечения пациентов, а так профилактика заболевании




Организационная структура проекта

Исследование проводилось на базе Больницы Сан‑Фиерро при поддержке Современного медицинского центра (СМЦ).

Состав научной группы:


  • Marinka Moore
  • Avalon Farmer
  • Amir Martini
  • Islam Dulatov
  • Robert Casseli
Для эффективности работы группа была разделена на две подкоманды:

  1. Координационно‑аналитическая (Marinka Moore, Avalon Farmer) — ведение журнала исследований, анализ данных, координация этапов.
  2. Экспериментально‑лабораторная (Amir Martini, Islam Dulatov, Robert Casseli) — работа с биообразцами, микроскопический анализ, фиксация результатов.

Методология и этапы исследования

Этап 1. Подготовка рабочей зоны и материалов

  • Проведение кварцевания лабораторного кабинета для обеспечения стерильности.
  • Доставка биообразцов из хранилища в специализированных резервуарах с контролируемыми условиями (температура, влажность).
  • Проверка целостности контейнеров и маркировки образцов.

Этап 2. Работа с биообразцами

Исследованы три клинических образца ДНК:

  1. Муковисцидоз (мутация гена CFTR).
  2. Гемофилия (мутации генов F8 или F9).
  3. Болезнь Паркинсона (мутации генов SNCA, LRRK2, PRKN).

Этап 3. Анализ геномов

  • Использование электронных микроскопов с высоким разрешением для визуализации структурных особенностей ДНК.
  • Сравнение последовательностей образцов с референсным геномом человека.
  • Выявление точечных мутаций, делеций, дупликаций и других аномалий.
  • Фиксация данных в электронном журнале с привязкой к клиническим проявлениям заболеваний.

Этап 4. Компьютерный анализ

  • Обработка данных с помощью специализированного программного обеспечения (биоинформатические алгоритмы выравнивания последовательностей, предсказание функциональных последствий мутаций).
  • Визуализация результатов в виде графиков и схем.
  • Оценка потенциальных мишеней для генного редактирования (CRISPR/Cas9, AAV‑векторы).

4. Ключевые результаты

  1. Муковисцидоз

    • Подтверждена мутация ΔF508 в гене CFTR (делеция трёх нуклеотидов, приводящая к потере фенилаланина в позиции 508).
    • Выявлены сопутствующие полиморфизмы, влияющие на тяжесть течения заболевания.
    • Обнаружена инверсия интрона 22 в гене F8 (характерная для тяжёлой формы гемофилии А).
    • Определены точечные мутации в гене F9 у пациентов с гемофилией В.
2) Изучение потовых проб граждан больных муковисцидозом и молекулярно-генетическое тестирование.

Муковисцидоз — это наследственное заболевание, вызванное мутацией гена CFTR (муковисцидозного трансмембранного регулятора проводимости), который отвечает за транспорт ионов хлора и натрия через эпителиальные клетки. Эта мутация приводит к нарушению функции белка, что вызывает повышенную вязкость секрета экзокринных желёз и системное поражение органов.

Диагностика

Для подтверждения диагноза используют:
  • Потовую пробу — определение уровня хлоридов в поте (положительный результат — более 60 ммоль/л).
  • Молекулярно-генетическое тестирование — выявление мутаций в гене CFTR.

    Командами больниц Сан-Фиерро и Лос-Сантоса была проведена диагностика у взятых проб граждан страдающих данной болезнью . Проводили исследование потовых проб и молекулярно-генетическое тестирование
    видео


    3) Крушение лайнера перевозившего лекарств на основ отредактированных ДНК для лечения больных
    • Тип воздушного судна: грузовой транспортный самолёт (предположительно, модель класса C‑130 или аналогичная).
    • Груз: партии препаратов на основе CRISPR/Cas9, AAV‑векторов и мРНК‑конструкций для генной терапии (муковисцидоз, спинальная мышечная атрофия, гемофилия и др.).
    • Место падения: прибрежная зона, территория пляжа близ деревни Ангел‑Пайн.
      • Полиция установила периметр безопасности радиусом 500 м от места падения.
      • Введены ограничения на передвижение: запрет на вход/выход без спецдопуска, перекрыты подъездные пути.
      • Организованы контрольно‑пропускные пункты с досмотром.
    • Военное сопровождение
      1. Подготовка к работе в зоне риска

        • Врачи и медперсонал облачились в защитные костюмы класса 4 (полная изоляция, фильтры HEPA, герметичные швы).
        • Были задействованы передвижные дезбарьеры для обработки при входе/выходе из зоны.
        • Каждая бригада сопровождалась биологом‑эпидемиологом для контроля безопасности.
        • С помощью сканеров с маркировкой RFID обнаружено 5 контейнеров с неповреждённой герметизацией.
          • внешний ударопрочный корпус;
          • термостабилизирующий слой;
          • внутренняя биозащитная капсула с индикаторами вскрытия.
        • На каждом — маркировка «GeneTherapy‑X.0», штрих‑коды и голографические пломбы.
    • видео

4.) Отчёт о проведении генетического исследования ДНК на наличие наследственных заболевании

Объект исследования: директор Радиоцентра Сан‑Фиерро
Дата проведения: [07.11.2025]
Место проведения: специализированное лабораторное помещение (оснащённое согласно требованиям биобезопасности уровня BSL‑2)
Цель: выявление наследственных заболеваний посредством анализа ДНК



1. Подготовка к забору биоматериала

Перед процедурой были выполнены следующие подготовительные мероприятия:

  • проведена дезинфекция помещения ультрафиолетовыми лампами и антисептическими растворами;
  • подготовлен стерильный инструментарий (ватные зонды, пробирки с транспортной средой, маркировочные материалы);
  • составлен идентификационный протокол пациента с фиксацией персональных данных и цели исследования;
  • проведён краткий инструктаж директора о порядке забора мазка и отсутствии дискомфортных ощущений.

2. Забор биоматериала

Метод: взятие мазка буккального эпителия (со внутренней поверхности щеки).
Обоснование выбора метода:


  • неинвазивность и безболезненность;
  • высокое содержание ядерных клеток, пригодных для выделения ДНК;
  • простота хранения и транспортировки образца.
Ход процедуры:

  1. Пациент прополоскал рот чистой водой для удаления пищевых остатков.
  2. Стерильным ватным зондом осуществлён аккуратный забор эпителиальных клеток с внутренней стороны щеки (по стандартной методике).
  3. Зонд помещён в пробирку с стабилизирующим буфером.
  4. Образец промаркирован уникальным идентификатором и зарегистрирован в лабораторном журнале.
  5. Время забора — не более 2 минут.

3. Лабораторный анализ

Этапы исследования:

  1. Выделение ДНК

    • лизис клеток и очистка ДНК от белков и примесей;
    • количественная оценка чистоты и концентрации препарата спектрофотометрически.
    • проведение ПЦР (полимеразной цепной реакции) с праймерами к генам, ассоциированным с наследственными патологиями:

      • CFTR (муковисцидоз);
      • F8/F9 (гемофилия);
      • SNCA, LRRK2, PRKN (болезнь Паркинсона);
      • иные гены по протоколу скрининга.

4. Результаты исследования

По итогам комплексного анализа установлено:

  • ДНК выделена в достаточном количестве (концентрация — [указать значение] нг/мкл, чистота A₂₆₀/A₂₈₀ = [указать значение]).
  • Целевые гены амплифицированы успешно, продукты ПЦР соответствуют ожидаемым размерам.
  • При секвенировании не выявлено патогенных мутаций в анализируемых локусах.
  • Микроскопический анализ подтвердил отсутствие хромосомных аномалий в исследованных участках.
Заключение: у директора Радиоцентра Сан‑Фиерро не обнаружено генетических маркеров наследственных заболеваний из перечня скринируемых патологий.
видео

5) Экспериментальное лечение дальтонизма

Отчёт о проведении экспериментального лечения дальтонизма

Проект СМЦ: «Генная инженерия»
Дата проведения:
08.11.2025
Пациент: вице‑губернатор Лас‑Вентурас
Диагноз: наследственный дальтонизм (нарушение восприятия цветовой гаммы)
Место проведения: лаборатория СМЦ (с использованием препарата, изготовленного в Либерти‑Сити)



1. Предыстория и обоснование метода

Дальтонизм — генетическое заболевание, обусловленное мутациями в генах, отвечающих за синтез фотопигментов в колбочках сетчатки. Традиционные методы коррекции (очки/линзы с фильтрами) лишь частично компенсируют дефицит цветовосприятия.

В рамках проекта СМЦ был разработан экспериментальный препарат на основе отредактированных ДНК, предназначенный для:


  • доставки функциональных копий генов, кодирующих недостающие фотопигменты;
  • стимуляции экспрессии белков в колбочках сетчатки;
  • восстановления трёхцветного зрения.
Препарат был синтезирован в научно‑исследовательском центре Либерти‑Сити с применением технологии рекомбинантных аденоассоциированных вирусов (rAAV) для целевой доставки генетического материала.


2. Методика лечения

2.1. Подготовка

  • Проведено офтальмологическое обследование (проверка остроты зрения, периметрии, электроретинография).
  • Подтверждён диагноз: нарушение восприятия красно‑зелёной части спектра.
  • Получено информированное согласие пациента.
  • Препарат доставлен в СМЦ в криоконтейнере с поддержанием температуры −80 °C.

2.2. Процедура

  1. Импрегнация контактных линз

    • Специальные мягкие линзы пропитаны раствором препарата (вирусные векторы с геном OPN1LW для L‑опсина).
    • Время экспозиции: 15 минут (контроль стерильности).
    • Линзы установлены на глазную поверхность пациента.
    • Длительность ношения: 6 часов под наблюдением врачей.
    • В течение процедуры — периодический контроль внутриглазного давления и реакции слизистой.

3. Результаты

Динамика восстановления цветовосприятия (оценка через 72 часа после процедуры):

  • Улучшение различения оттенков: пациент начал идентифицировать цвета, ранее воспринимавшиеся как монохромные (например, красный/зелёный).
  • Расширение цветовой гаммы: зафиксировано 80 % восстановление способности различать основные цвета и их сочетания.
    • «Цвета стали ярче, появились нюансы, которых я не видел раньше».
    • Отмечено снижение зрительной усталости при работе с цветными изображениями.
видео
 
Последнее редактирование:
Статус
Закрыто для дальнейших ответов.
Назад
Верх